Curso como trabalhar os discos intervertebrais.

A força  do disco intervertebral pode ser aumentada? vamos ter pesos, molas, ketellebell … para nossos discos? O que a ciência diz?

Este material é breve resumo do que aprenderemos nesse curso. Ele foi resultado de muitos meses de estudo, revisão bibliográfica. Mas, quando digo revisão eu não falo de livros estou dizendo nas mais recentes pesquisas cientificas publicadas em revistas de peso (obviamente quando se fala em ciência se fala a nível mundial) e muita coisa será implantada na pratica clinica após estas revisões, principalmente na área da fisioterapia e movimento onde muita ciência esta sendo feita e mudara rapidamente como estamos trabalhando, então, o acesso a este curso é acesso ao novo sem passar meses lendo como eu fiz.

Estudos in vitro de tecido ou células de DIV, ou influências genéticas na degeneração de DIV,  foram também consideradas em nossa revisão, o nosso aluno  ficara sabendo então sobre as revisões recentes que falaram extensivamente sobre estes tópicos no DIV. O melhor de tudo sair informado sem perder meses buscando literatura e mais outros meses estudando. 

artigos anteriores

1 Problemas de coluna -hérnia de disco 

  1. Problemas de coluna – discos intervertebrais 

 

 

Cargas podem afetar o disco intervertebral (DIV)?

 

Todos os sistemas no corpo humano mostram algum tipo de resposta a cargas. Nas ciências do exercício e do esporte, muito foco está no sistema muscular. Isso se deve, em parte, a vieses compreensíveis: os músculos são fáceis de ver, são fáceis (ou mais fáceis) de medir, a realização de medições invasivas é menos problemática e os músculos respondem rapidamente aos protocolos de carga.

 

No tratamento conservador e no controle da dor na coluna vertebral por exercício, o foco é novamente e amplamente colocado no sistema muscular, provavelmente devido aos mesmos vieses compreensíveis. No entanto, e os discos intervertebrais (DIVs)? Os DIVs são bem reconhecidos como fontes de dor e muito foco no tratamento ortopédico das condições da coluna vertebral é colocado sobre essas estruturas. No entanto, no campo do exercício, se você perguntar a um profissional do exercício “O que podemos fazer para fortalecer o disco intervertebral?”, Respostas vagas e especulativas podem ser esperadas como uma resposta inicial. Nos livros didáticos de fisiologia do esporte e do exercício, é comum encontrar capítulos sobre o impacto do exercício no músculo, osso e tendão, mas não no DIV.

 

A ideia de que certos tipos de cargas podem “fortalecer”, ou pelo menos alterar, o DIV não é nova como uma publicação de 1984 mostra. Um trabalho posterior [2] fez uma pergunta retórica: “A força do tecido do disco pode ser aumentada?”.

Nos DIVs removidos no momento da cirurgia em pacientes com escoliose, a distribuição dos colágenos tipos I e II nos DIVs correspondeu à curva da escoliose [1]. Portanto, está claro que o tecido DIV, como outros tecidos, responde a estímulos mecanobiológicos. Irei fornecer uma breve resumo do que encontrei e que aprenderemos em nosso curso.

O meu objetivo com a revisão foi sintetizar a literatura para tentar entender o seguinte:

1. Que tipos de exercícios e protocolos de carga são benéficos ou prejudiciais para o DIV ?;

2. Podemos razoavelmente esperar “fortalecer” um DIV danificado ou degenerado?

3. Se não, qual deve ser o objetivo do exercício?

4. Quais são as lacunas em nosso conhecimento sobre exercício e o DIV?

5. Quais são os passos mais frutíferos mais e prováveis

 sobre exercício e o DIV?

Para responder a essas questões, examinei a literatura sobre nutrição de um DIV, estudos de célula e disco inteiro, modelos animais de exercício, estudos humanos de exercício e DIV (medida pela medida substituta do comprimento da coluna vertebral ou estatura do corpo), degeneração do DIV e o impacto do esporte, e também abordagens de medição para estudos humanos do DIV.

Irei fornecer um breve resumo do que encontrei e que aprenderemos em nosso curso.

Breve visão geral da homeostase do disco na saúde e na doença: o que é o disco “saúdavel”?

 

Uma função principal do DIV é permitir a mobilidade da coluna vertebral. Anatomicamente, o DIV pode ser dividido no núcleo pulposo e anel fibroso. O núcleo pulposo, em seu estado saudável, é um tecido hidratado, parecido com um gel, rico em proteoglicanos, que atraem e ligam a água. Os proteglicanos são mais prevalentes no núcleo do que no anel fibroso [3]. O ânulo fibroso, em seu estado saudável, consiste de aproximadamente 15–25 lamelas concêntricas de fibras de colágeno obliquamente orientadas [4] que circundam o núcleo pulposo. A orientação de cada lamela se altera de uma lamela para outra, de modo que ela exibe uma estrutura rachadura. Tanto o anel fibroso [5] como o núcleo pulposo [6] estão ancorados nas placas terminais cartilaginosas. O núcleo pulposo gelatinoso está contido no interior do anel fibroso, o que significa que quando a força de compressão axial é aplicada ao DIV, a carga axial é convertida em pressão no núcleo e contida pelo ânulo fibroso. Isso permite mobilidade, mantendo um certo grau de estabilidade.

Numerosos artigos foram escritos sobre o DIV saudável e as mudanças que ocorrem com a degeneração de DIV (para uma discussão aprofundada, referimos os leitores a Adams e Roughley [7] e Vergroesen et al. [8]). Resumidamente, na idade adulta, a matriz extracelular do DIV é mantida pelos condrócitos nucleares. Sob a influência de sinais mecanobiológicos anabólicos, predominantemente hidrostáticos, essas células produzem proteoglicanos e quantidades limitadas de colágeno tipo II. Isto é o que é referido como um disco saudável. Quando a pressão hidrostática é reduzida, devido a danos na matriz extracelular, degeneração celular da matriz (por exemplo, devido ao fumo) ou sobrecarga prolongada, as forças de cisalhamento no DIV aumentam e as células param de produzir proteoglicanos. Quando isso persiste, as células se tornam catabólicas e começam a produzir colágeno tipo I em vez de proteoglicanos, remodelando o núcleo pulposo em forma de gel para um tecido mais fibroso – isso é chamado de disco degenerativo. Um disco degenerado perde sua capacidade de estabilizar o segmento de movimento; portanto, sua função principal é perdida. A saúde e a degeneração são definidas em uma tabela que será dada no curso. O DIV em um “estado mais saudável” tem indicações mecanobiológicas anabólicas para aumentar a produção de proteoglicanos. A melhor definição possível de “saúde” do disco encontrada foi  a “ausência de degeneração discal”.

Como a carga afeta   disco?

Que tipos de padrões de carregamento e atividades são melhores para o DIV?

No geral, as informações dos estudos em humanos, animais, em células e discos inteiros nos permitem sugerir um tipo de carregamento que é “provavelmente mais saudável” para o DIV:

 

  • Tipo de carregamento: o carregamento deve ser dinâmico. Carga estática, imobilização e desuso são prejudiciais. Carga alta e / ou de impacto é provavelmente prejudicial.
  • Sentido de carregamento: carga axial, para a qual o DIV é adaptado, deve ser aplicada. Intervalos extremos de movimento, atividades de torção e flexão com compressão são tipos de carregamento que provavelmente são prejudiciais.
  • Frequência de carregamento e / ou velocidade: ciclos de carregamento mais lentos são provavelmente melhores. Uma revisão [72] de estudos de tecido celular e de disco inteiro recomendou de 6 a 60 ciclos / min, mas a medida em que isso pode ser aplicado diretamente a uma pessoa que realiza exercícios não é clara. A literatura esportiva [44, 45] sobre a degeneração de DIV sugere que os tipos de carga rápida, de alto impacto e súbita são prejudiciais para o DIV. Assim, velocidades de movimento ao redor de 60 ciclos / min (isto é, 1 ciclo / seg), o que envolveria um componente balístico, podem ser prejudiciais para o DIV.
  • Magnitude do carregamento: uma faixa de carga de 0,2-0,8 MPa, gerando pressões intradiscais de 0,3-1,2 MPa, foi sugerida em uma revisão recente [72] como uma faixa ótima. As pressões intra-discais em uma variedade de tarefas foram medidas [75] com pé estático, caminhada e jogging tipicamente dentro desta faixa, mas quando deitado, inclinado para frente em pé, levantando uma carga de 20 kg e certas posturas sentadas (como sentado caído em plena flexão) ficam fora deste intervalo. Atividades de alto impacto e tarefas explosivas provavelmente geram magnitudes de carga no DIV fora dessa faixa saudável.
  • Duração do carregamento e padronização da carga: 8 h / dia de carga foi sugerido como apropriado em uma revisão prévia [72]. A base de conhecimento é, no entanto, limitada para determinar qual a duração do carregamento ou que tipo de padrões de carga de descarga são melhores para o DIV. É possível que um padrão de exercício – descanso – exercício ao longo do dia seja mais benéfico do que uma duração específica de carregamento per se.

Também é importante considerar a hora do dia no carregamento.
Assim nem todo movimento é o ideal para cada horário.
Inclusive no Pilates tem exercícios que não são indicados para
todos os momentos do dia.

O que afeta seus DIVs, como trabalhar estes discos para manter eles saudáveis ?  Trabalhar aplicando  o que a ciência esta comprovando o torna um profissional de ponta, diferente daqueles que replica movimento.

Nesse curso abordaremos além do apresentado aqui:

As cargas afetam o disco?

1.1      Nutrição e Carga do Disco

1.2      Humanos, Exercício e Estatura

1.3      Humanos e Esporte

1.4      Ocupações e manobras que constituem risco para o DIV

1.5      Estudos de carregamento externo nas células, em todo o disco e em animais Que tipos de padrões de carregamento e atividades são melhores para o DIV? 

Podemos razoavelmente esperar “fortalecer” um DIV danificado ou degenerado com exercício?

Influência da Genética na Saúde do Disco

Envelhecimento e o disco: existe um período crítico para melhorar a saúde do disco de forma vitalícia?

Quais as melhores abordagens podem ser usadas em seres humanos?

 

Referencias

  1. Brickley-Parsons D, Glimcher MJ. Is the chemistry of collagen in intervertebral discs an expression of Wolff’s Law? A study of the human lumbar spine. Spine. 1984;9:148–63.
    1. Boos N, Weissbach S, Rohrbach H, et al. Classification of age- related changes in lumbar intervertebral discs: 2002 Volvo Award in basic science. Spine. 2002;27:2631–44. doi:10.1097/ 01.BRS.0000035304.27153.5B.
    2. Luoma K, Vehmas T, Riihima ̈ki H, et al. Disc height and signal intensity of the nucleus pulposus on magnetic resonance imag- ing as indicators of lumbar disc degeneration. Spine. 2001; 26:680–6.
    3. Sivan SS, Wachtel E, Roughley P. Structure, function, aging and turnover of aggrecan in the intervertebral disc. Biochim Biophys Acta. 2014;1840:3181–9. doi:10.1016/j.bbagen.2014.07.013.
    4. MacKelvie KJ, Khan KM, McKay HA. Is there a critical period for bone response to weight-bearing exercise in children and adolescents? A systematic review. Br J Sports Med. 2002;36: 250–7 (discussion 257).
    5. Ledsome JR, Lessoway V, Susak LE, et al. Diurnal changes in lumbar intervertebral distance, measured using ultrasound. Spine. 1996;21:1671–5.
    6. Wang Y-XJ, Griffith JF, Leung JCS, et al. Age related reduction of T1rho and T2 magnetic resonance relaxation times of lumbar intervertebral disc. Quant Imaging Med Surg. 2014;4:259–64. doi:10.3978/j.issn.2223-4292.2014.07.14.
    7. VanTulder MW, Assendelft WJ, Koes BW, et al. Spinal radio- graphic findings and nonspecific low back pain. A systematic review of observational studies. Spine. 1997;22:427–34.
    8. Boden SD, McCowin PR, Davis DO, et al. Abnormal magnetic- resonance scans of the cervical spine in asymptomatic subjects. A prospective investigation. J Bone Joint Surg Am. 1990;72: 1178–84.
    9. Boden SD, Davis DO, Dina TS, et al. Abnormal magnetic-res- onance scans of the lumbar spine in asymptomatic subjects. A prospective investigation. J Bone Joint Surg Am. 1990;72: 403–8.
    10. Vernon-Roberts B, Pirie CJ. Degenerative changes in the intervertebral discs of the lumbar spine and their sequelae. Rheumatol Rehabil. 1977;16:13–21.
    11. Pfirrmann CW, Metzdorf A, Zanetti M, et al. Magnetic reso- nance classification of lumbar intervertebral disc degeneration. Spine. 2001;26:1873–8.
    12. Belavy ́ DL, Armbrecht G, Gast U, et al. Countermeasures against lumbar spine deconditioning in prolonged bed-rest:
      1. Bartolozzi C, Caramella D, Zampa V, et al. The incidence of disk changes in volleyball players. The magnetic resonance findings [in Italian]. Radiol Med. 1991;82:757–60.
      2. Goldstein JD, Berger PE, Windler GE, et al. Spine injuries in gymnasts and swimmers. An epidemiologic investigation. Am J Sports Med. 1991;19:463–8.
      3. Hangai M, Kaneoka K, Hinotsu S, et al. Lumbar intervertebral disk degeneration in athletes. Am J Sports Med. 2009;37:149– 55. doi:10.1177/0363546508323252.
      4. Kaneoka K, Shimizu K, Hangai M, et al. Lumbar intervertebral disk degeneration in elite competitive swimmers: a case control study. Am J Sports Med. 2007;35:1341–5. doi:10.1177/0363546 507300259.
      5. Videman T, Sarna S, Battie ́ MC, et al. The long-term effects of physical loading and exercise lifestyles on back-related symp- toms, disability, and spinal pathology among men. Spine. 1995;20:699–709.
      6. Videman T, Nurminen M, Troup JD. 1990 Volvo Award in clinical sciences. Lumbar spinal pathology in cadaveric material in relation to history of back pain, occupation, and physical loading. Spine. 1990;15:728–40.
      7. Kordi M, Belavy ́ DL, Armbrecht G, et al. Loss and re-adaptation of lumbar intervertebral disc water signal intensity after pro- longed bedrest. J Musculoskelet Neuronal Interact. 2015;15: 294–300.
      8. Hangai M, Kaneoka K, Kuno S, et al. Factors associated with lumbar intervertebral disc degeneration in the elderly. Spine J. 2008;8:732–40. doi:10.1016/j.spinee.2007.07.392.
      9. Adams MA, Hutton WC. Prolapsed intervertebral disc. A hyperflexion injury. 1981 Volvo Award in Basic Science. Spine. 1982;1982(7):184–91.
      10. Wade KR, Robertson PA, Thambyah A, et al. How healthy discs herniate: a biomechanical and microstructural study investigat- ing the combined effects of compression rate and flexion. Spine. 2014;39:1018–28. doi:10.1097/BRS.0000000000000262.
      11. Roaf R. A study of the mechanics of spinal injuries. J Bone Joint Surg Br. 1960;42:810–23.
      12. Wang Y, Videman T, Battie ́ MC. ISSLS prize winner: lumbar vertebral endplate lesions: associations with disc degeneration and back pain history. Spine. 2012;37:1490–6. doi:10.1097/ BRS.0b013e3182608ac4.
      13. Holm S, Holm AK, Ekstro ̈ m L, et al. Experimental disc degeneration due to endplate injury. J Spinal Disord Tech. 2004;17:64–71.
      14. Schmidt H, Heuer F, Wilke H-J. Dependency of disc degener- ation on shear and tensile strains between annular fiber layers for complex loads. Med Eng Phys. 2009;31:642–9. doi:10.1016/j. medengphy.2008.12.004.
      15. Adams MA, Hutton WC. Gradual disc prolapse. Spine. 1985;10:524–31.
      16. Hansson TH, Keller TS, Spengler DM. Mechanical behavior of the human lumbar spine. II. Fatigue strength during dynamic compressive loading. J Orthop Res. 1987;5:479–87. doi:10. 1002/jor.1100050403.
      17. Holm S, Nachemson A. Variations in the nutrition of the canine intervertebral disc induced by motion. Spine. 1983;8:866–74.
      18. Sa ̈a ̈ma ̈nen AM, Puustja ̈rvi K, Ilves K, et al. Effect of running exercise on proteoglycans and collagen content in the interver- tebral disc of young dogs. Int J Sports Med. 1993;14:48–51. doi:10.1055/s-2007-1021145.
      19. Brisby H, Wei AQ, Molloy T, et al. The effect of running exercise on intervertebral disc extracellular matrix production inVanharanta H. The intervertebral disc: a biologically active tissue challenging therapy. Ann Med. 1994;26:395–9.
        1. Scott JE, Bosworth TR, Cribb AM, et al. The chemical mor- phology of age-related changes in human intervertebral disc glycosaminoglycans from cervical, thoracic and lumbar nucleus pulposus and annulus fibrosus. J Anat. 1994;184(Pt 1):73–82.
        2. Marchand F, Ahmed AM. Investigation of the laminate structure of lumbar disc anulus fibrosus. Spine. 1990;15:402–10.
        3. Inoue H. Three-dimensional architecture of lumbar interverte- bral discs. Spine. 1981;6:139–46.
        4. Wade KR, Robertson PA, Broom ND. A fresh look at the nucleus-endplate region: new evidence for significant structural integration. Eur Spine J. 2011;20:1225–32. doi:10.1007/s00586- 011-1704-y.
        5. Adams MA, Roughley PJ. What is intervertebral disc degener- ation, and what causes it? Spine. 2006;31:2151–61. doi:10.1097/ 01.brs.0000231761.73859.2c.
        6. Vergroesen P-PA, Kingma I, Emanuel KS, et al. Mechanics and biology in intervertebral disc degeneration: a vicious circle. Osteoarthr Cartil. 2015;23:1057–70. doi:10.1016/j.joca.2015.03. 028.
        7. Urban JPG, Smith S, Fairbank JCT. Nutrition of the interver- tebral disc. Spine. 2004;29:2700–9.
        8. Katz MM, Hargens AR, Garfin SR. Intervertebral disc nutrition. Diffusion versus convection. Clin Orthop. 1986;210:243–5.
        9. Urban JP, Holm S, Maroudas A, et al. Nutrition of the inter-vertebral disc: effect of fluid flow on solute transport. Clin

          Orthop. 1982;170:296–302.

        10. Urban JP, Holm S, Maroudas A. Diffusion of small solutes intothe intervertebral disc: as in vivo study. Biorheology. 1978;15:

          203–21.

        11. Bayliss MT, Urban JP, Johnstone B, et al. In vitro method formeasuring synthesis rates in the intervertebral disc. J Orthop

          Res. 1986;4:10–7. doi:10.1002/jor.1100040102.

        12. Ohshima H, Tsuji H, Hirano N, et al. Water diffusion pathway, swelling pressure, and biomechanical properties of the interver-tebral disc during compression load. Spine. 1989;14:1234–44.
        13. Ohshima H, Urban JP, Bergel DH. Effect of static load on matrix synthesis rates in the intervertebral disc measured in vitro by a new perfusion technique. J Orthop Res. 1995;13:22–9.doi:10.1002/jor.1100130106.
        14. McMillan DW, Garbutt G, Adams MA. Effect of sustainedloading on the water content of intervertebral discs: implications

          for disc metabolism. Ann Rheum Dis. 1996;55:880–7.

        15. Arun R, Freeman BJC, Scammell BE, et al. 2009 ISSLS Prize Winner: what influence does sustained mechanical load have on diffusion in the human intervertebral disc?: an in vivo study using serial postcontrast magnetic resonance imaging. Spine.2009;34:2324–37. doi:10.1097/BRS.0b013e3181b4df92.
        16. Das DB, Welling A, Urban JPG, et al. Solute transport in intervertebral disc: experiments and finite element modeling. Ann N Y Acad Sci. 2009;1161:44–61. doi:10.1111/j.1749-6632.2008.04075.x.
        17. Ferguson SJ, Ito K, Nolte LP. Fluid flow and convective trans-port of solutes within the intervertebral disc. J Biomech.

          2004;37:213–21.

        18. De Puky P. The physiological oscillation of the length of thebody. Acta Orthop. 1935;6:338–47.
        19. Ahrens SF. The effect of age on intervertebral disc compressionduring running. J Orthop Sports Phys Ther. 1994;20:17–21.

          doi:10.2519/jospt.1994.20.1.17.

        20. Carrigg SY, Hillemeyer LE, Villanueva EE. The effect of running-induced intervertebral disc compression on thoracolumbar verte- bral column mobility in young, healthy males. J Orthop Sports Phys Ther. 1992;16:19–24. doi:10.2519/jospt.1992.16.1.19.
        21. Dowzer CN, Reilly T, Cable NT. Effects of deep and shallow water running on spinal shrinkage. Br J Sports Med. 1998;32: 44–8.

         

         

         

        White TL, Malone TR. Effects of running on intervertebral disc height. J Orthop Sports Phys Ther. 1990;12:139–46.

        Boocock MG, Garbutt G, Linge K, et al. Changes in stature following drop jumping and post-exercise gravity inversion. Med Sci Sports Exerc. 1990;22:385–90.

        Fowler NE, Lees A, Reilly T. Spinal shrinkage in unloaded and loaded drop-jumping. Ergonomics. 1994;37:133–9. doi:10.1080/ 00140139408963631.

        Leatt P, Reilly T, Troup JG. Spinal loading during circuit weight-training and running. Br J Sports Med. 1986;20:119–24.

        Reilly T, Freeman KA. Effects of loading on spinal shrinkage in males of different age groups. Appl Ergon. 2006;37:305–10. doi:10.1016/j.apergo.2005.07.004.

        Tyrrell AR, Reilly T, Troup JD. Circadian variation in stature and the effects of spinal loading. Spine. 1985;10:161–4.

        Van Diee ̈n JH, Creemers M, Draisma I, et al. Repetitive lifting and spinal shrinkage, effects of age and lifting technique. Clin Biomech Bristol Avon. 1994;9:367–74. doi:10.1016/0268- 0033(94)90067-1.

        Malko JA, Hutton WC, Fajman WA. An in vivo magnetic res- onance imaging study of changes in the volume (and fluid content) of the lumbar intervertebral discs during a simulated diurnal load cycle. Spine. 1999;24:1015–22.

        Malko JA, Hutton WC, Fajiman WA. An in vivo study of the changes in volume (and fluid content) of the lumber interver- tebral disc after overnight bed rest and during an 8-hour walking protocol. J Spinal Disord Tech. 2002;15:157–63.

        Dimitriadis AT, Papagelopoulos PJ, Smith FW, et al. Interver- tebral disc changes after 1 h of running: a study on athletes. J Int Med Res. 2011;39:569–79.

        Kingsley MI, D’Silva LA, Jennings C, et al. Moderate-intensity running causes intervertebral disc compression in young adults. Med Sci Sports Exerc. 2012;44:2199–204. doi:10.1249/MSS. 0b013e318260dbc1.

        Botsford DJ, Esses SI, Ogilvie-Harris DJ. In vivo diurnal vari- ation in intervertebral disc volume and morphology. Spine. 1994;19:935–40.

        Hellstro ̈ m M, Jacobsson B, Swa ̈ rd L, et al. Radiologic abnor- malities of the thoraco-lumbar spine in athletes. Acta Radiol. 1990;31:127–32.

        Granhed H, Morelli B. Low back pain among retired wrestlers and heavyweight lifters. Am J Sports Med. 1988;16:530–3.

        Swa ̈rd L, Hellstrom M, Jacobsson B, et al. Back pain and radiologic changes in the thoraco-lumbar spine of athletes. Spine. 1990;15:124–9.

        Nagashima M, Abe H, Amaya K, et al. Risk factors for lumbar disc degeneration in high school American football players: a prospective 2-year follow-up study. Am J Sports Med. 2013;41:2059–64. doi:10.1177/0363546513495173.

        Bru ̈ggemann G-P, Krahl H. Belastungen und Risiken im weib- lichen Kunstturnen. Teil 1, Aus der Sicht von Biomechanik und Sportmedizin [Loading and risks in female gymnasts. Part 1, biomechanics and sports medicine]. Schorndorf: Hofmann; 2000.

        Ranson CA, Kerslake RW, Burnett AF, et al. Magnetic reso- nance imaging of the lumbar spine in asymptomatic professional fast bowlers in cricket. J Bone Joint Surg Br. 2005;87:1111–6. doi:10.1302/0301-620X.87B8.16405.

        Videman T, Battie ́ MC, Gibbons LE, et al. Lifetime exercise and disk degeneration: an MRI study of monozygotic twins. Med Sci Sports Exerc. 1997;29:1350–6.

        Maurer M, Soder RB, Baldisserotto M. Spine abnormalities depicted by magnetic resonance imaging in adolescent rowers. Am J Sports Med. 2011;39:392–7. doi:10.1177/0363546510381365.

        Kraft CN, Pennekamp PH, Becker U, et al. Magnetic resonance imaging findings of the lumbar spine in elite horseback riders:1 3correlations with back pain, body mass index, trunk/leg-length coefficient, and riding discipline. Am J Sports Med. 2009;37: 2205–13.doi:10.1177/0363546509336927.a rat model. Spine. 2010;35:1429–36. doi:10.1097/BRS.0b013e3181e0f5bc.

      64. Sasaki N, Henriksson HB, Runesson E, et al. Physical exercise affects cell proliferation in lumbar intervertebral disc regions in rats.. 2012;37:1440–7. doi:10.1097/BRS.0b013e31824ff87d.

      65. Puustja ̈rvi K, Lammi M, Kiviranta I, et al. Proteoglycan syn- thesis in canine intervertebral discs after long-distance running training. J Orthop Res. 1993;11:738–46. doi:10.1002/jor.1100110516.

      66. Puustja ̈rvi K, Lammi M, Helminen H, et al. Proteoglycans in the intervertebral disc of young dogs following strenuous running exercise. Connect Tissue Res. 1994;30:225–40.

      67. Puustja ̈rviK,TakalaT,WangW,etal.Enhancedprolylhy- droxylase activity in the posterior annulus fibrosus of canine intervertebral discs following long-term running exercise. EurSpine J. 1993;2:126–31.

      68. Neufeld JH. Induced narrowing and back adaptation of lumbarintervertebral discs in biomechanically stressed rats. Spine.1992;17:811–6.

      69. Cassidy JD, Yong-Hing K, Kirkaldy-Willis WH, et al. A study of the effects of bipedism and upright posture on the lum- bosacral spine and paravertebral muscles of the Wistar rat. Spine. 1988;13:301–8.

      70. Higuchi M, Abe K, Kaneda K. Changes in the nucleus pulposus of the intervertebral disc in bipedal mice. A light and electron microscopic study. Clin Orthop. 1983;175:251–7.

      71. Yamada K. The dynamics of experimental posture. Experi- mental study of intervertebral disk herniation in bipedal animals. Clin Orthop. 1962;25:20–31.

      72. Chan SCW, Ferguson SJ, Gantenbein-Ritter B. The effects of dynamic loading on the intervertebral disc. Eur Spine J. 2011;20:1796–812. doi:10.1007/s00586-011-1827-1.

      73. Iatridis JC, MacLean JJ, Roughley PJ, et al. Effects of mechanical loading on intervertebral disc metabolism in vivo. J Bone Joint Surg Am. 2006;88(Suppl 2):41–6.

      74. Le Maitre CL, Frain J, Fotheringham AP, et al. Human cells derived from degenerate intervertebral discs respond differently to those derived from non-degenerate intervertebral discs fol- lowing application of dynamic hydrostatic pressure. Biorheol- ogy. 2008;45:563–75.

      75. Wilke HJ, Neef P, Caimi M, et al. New in vivo measurements of pressures in the intervertebral disc in daily life. Spine. 1999;24:755–62.

      76. Mayer JE, Iatridis JC, Chan D, et al. Genetic polymorphisms associated with intervertebral disc degeneration. Spine J. 2013;13:299–317. doi:10.1016/j.spinee.2013.01.041.

      77. Elfering A, Semmer N, Birkhofer D, et al. Risk factors for lumbar disc degeneration: a 5-year prospective MRI study in asymptomatic individuals. Spine. 2002;27:125–34.

      78. Yuan H-Y, Tang Y, Liang Y-X, et al. Matrix metalloproteinase- 3 and vitamin d receptor genetic polymorphisms, and their interactions with occupational exposure in lumbar disc degen- eration. J Occup Health. 2010;52:23–30.

      79. Coventry MB. Anatomy of the intervertebral disk. Clin Orthop. 1969;67:9–15.

      80. Kraemer J, Kolditz D, Gowin R. Water and electrolyte content of human intervertebral discs under variable load. Spine. 1985;10:69–71.

      81. Koeller W, Muehlhaus S, Meier W, et al. Biomechanical properties of human intervertebral discs subjected to axial dynamic compression–influence of age and degeneration. J Biomech. 1986;19:807–16.

      82. Sether LA, Yu S, Haughton VM, et al. Intervertebral disk: normal age-related changes in MR signal intensity. Radiology. 1990;177:385–8. doi:10.1148/radiology.177.2.2217773.1 3D. L. Belavy ́ et al.Intervertebral Disc and Exercise resistive exercise with and without whole-body vibration. J Appl

    Physiol. 2010;109:1801–11.
    95. An HS, Anderson PA, Haughton VM, et al. Introduction: disc degeneration: summary. Spine. 2004;29:2677–8.

    96. Marinelli NL, Haughton VM, Munoz A, et al. T2 relaxation times of intervertebral disc tissue correlated with water content and proteoglycan content. Spine. 2009;34:520–4.

    97. Weidenbaum M, Foster RJ, Best BA, et al. Correlating magnetic resonance imaging with the biochemical content of the normal human intervertebral disc. J Orthop Res. 1992;10:552–61.doi:10.1002/jor.1100100410.

    98. Antoniou J, Pike GB, Steffen T, et al. Quantitative magnetic resonance imaging in the assessment of degenerative disc disease. Magn Reson Med. 1998;40:900–7.

    99. Kealey SM, Aho T, Delong D, et al. Assessment of apparent diffusion coefficient in normal and degenerated intervertebral lumbar disks: initial experience. Radiology. 2005;235:569–74. doi:10.1148/radiol.2352040437.

    100. Antoniou J, Demers CN, Beaudoin G, et al. Apparent diffusion coefficient of intervertebral discs related to matrix composition and integrity. Magn Reson Imaging. 2004;22:963–72. doi:10. 1016/j.mri.2004.02.011.

    101. Wu N, Liu H, Chen J, et al. Comparison of apparent diffusion coefficient and T2 relaxation time variation patterns in assess- ment of age and disc level related intervertebral disc changes. PLoS One. 2013;8:e69052. doi:10.1371/journal.pone.0069052.

    102. Johannessen W, Auerbach JD, Wheaton AJ, et al. Assessment of human disc degeneration and proteoglycan content using T1rho- weighted magnetic resonance imaging. Spine. 2006;31:1253–7. doi:10.1097/01.brs.0000217708.54880.51.

    103. Rajasekaran S, Babu JN, Arun R, et al. ISSLS prize winner: a study of diffusion in human lumbar discs: a serial magnetic resonance imaging study documenting the influence of the endplate on diffusion in normal and degenerate discs. Spine. 2004;29:2654–67.

    104. Nguyen-minh C, Haughton VM, Papke RA, et al. Measuring diffusion of solutes into intervertebral disks with MR imaging and paramagnetic contrast medium. AJNR Am J Neuroradiol. 1998;19:1781–4.

     

Deixe uma resposta